α-葡聚糖酶发酵工艺及其酶活性影响因素研究

doi:10.7506/spkx1002-6630-201307036

食品科学 ›› 2013, Vol. 34 ›› Issue (7): 171-174.doi: 10.7506/spkx1002-6630-201307036

α-葡聚糖酶发酵工艺及其酶活性影响因素研究

麻少莹，陆海勤，杭方学，李凯*，苏佳廷，郭海蓉

广西大学轻工与食品工程学院，广西南宁 530004

收稿日期:2011-10-18 修回日期:2013-02-22 出版日期:2013-04-15 发布日期:2013-03-20
通讯作者: 李凯 E-mail:mashaoying@yeah.net
基金资助:
“十二五”国家科技支撑计划重点项目(20111BAE16B03)；广西自然科学基金项目(2010GXNSFA013044)

Factors Affecting α-Dextranase Fermentation and Its Enzymatic Activity

MA Shao-ying，LU Hai-qin，HANG Fang-xue，LI Kai*，SU Jia-ting，GUO Hai-rong

College of Light Industry and Food Engineering, Guangxi University, Nanning 530004, China

Received:2011-10-18 Revised:2013-02-22 Online:2013-04-15 Published:2013-03-20
Contact: LI Kai E-mail:mashaoying@yeah.net

摘要/Abstract

摘要： 对细丽毛壳液体发酵产α-葡聚糖酶的主要影响因子，包括发酵初始pH值、装液量、接种量、发酵时间等进行研究，并考察pH值、温度、作用时间对α-葡聚糖酶酶活力的影响。结果表明：最佳发酵条件为发酵pH5.5、装液量20mL/250mL、接种量3%、发酵时间92h，菌株酶活力由原来的79.0U/mL提高到231.5U/mL，提高了193%。α-葡聚糖酶的酶活力在pH5.5、温度60℃、作用时间10min时最高。

关键词: 细丽毛壳, α-葡聚糖酶, 发酵工艺, 酶活性

Abstract: The main factors influencing α-dextranase production by Chaetomium gracile in liquid-state fermentation (including pH, medium volume in a shaking flask, inoculum size and fermentation time) were studied. Meanwhile, the effects of pH, temperature and time on α-dextranase activity were investigated. The optimal fermentation conditions for α-dextranase production were 5.5, 20 mL/250 mL, 3% and 92 h for pH, medium volume in a shaking flask, inoculum size and fermentation time, respectively. Under these conditions, the α-dextranase activity of fermentation broth was 231.5 U/mL, which was 193% higher than the 79.0 U/mL before optimization. The highest α-dextranase activity was observed under the optimal reaction conditions of pH 5.5, 60 ℃ and 10 min.

Key words: Chaetomium gracile, α-dextranase, fermentation, enzyme activity

中图分类号:

Q936

麻少莹，陆海勤，杭方学，李凯*，苏佳廷，郭海蓉. α-葡聚糖酶发酵工艺及其酶活性影响因素研究[J]. 食品科学, 2013, 34(7): 171-174.

MA Shao-ying，LU Hai-qin，HANG Fang-xue，LI Kai*，SU Jia-ting，GUO Hai-rong. Factors Affecting α-Dextranase Fermentation and Its Enzymatic Activity[J]. FOOD SCIENCE, 2013, 34(7): 171-174.

参考文献

[1] ROBYT J F, EKLUND S H. Stereochemistry involved in the mechanism of action of dxtransucrase in the synthesis of dextran and the formation of acceptor products[J]. Bioorg Chem, 1982, 11:115-132.
[2] IMRI F K E, TILBURY R H. Polysaccharides in sugar cane and its products[J]. Sugar Technology Reviews Ⅰ, 1972，291-361.
[3] 陈维钧，许斯欣. 蔗糖结晶与成糖[M]. 北京：中国轻工业出版社，2001:332.
[4] G. Eggleston, A. Monge. Optimization of sugarcane factory application of commercial dextranases[J]. Process Biochemistry, 2005,40:1881-1894.
[5] 华南工学院等合编.制糖工业分析[M]. 北京：中国轻工业出版社，1981:53-57.
[6] 李墉，郑长庚. 甘蔗制糖化学管理分析方法[M]. 广州：中国轻工业总会甘蔗糖业质量监督检测中心，1995:30-33.
[7] CUDDIHY J A, DAY D F (1999). The process and financial impact of dextran on a sugar factory[J]. Midland Research Laboratories, Inc. On-line http://www.midlandresearchlabsinc.com/doclib/dexfinan.pdf.
[8] CUDDIHY J A, RAUH J S, PORRO M E (1998). Improving sugar recovery with sugar factory[J]. Midland Research Laboratories, Inc. On-line http://www.midlandresearchlabsinc.com/doclib/dexfinan.pdf.
[9] SAHADEO P, LIONNET G R E, DIVIS S B. Mixed juice charification revisited[J]. Proc S Afr Sug Technol Ass，2002，76:421-432.
[10] Morel du Boil PG. The role of oligosaccharides in crystal elongation[J]. Proc S Afr Sug Technol Ass，1991，65:171-178.
[11] PAUH J S, CUDDIHY J A , FALGOUT R N. Analysing dextran in the sugar industry: A review of dextran in the factory and a new analytical technique[J]. Proc Sug Ind Technol Ass，1999, 58:747.
[12] INKERMAN P A, JAMES G P. DextranaseⅡ:Practical application of the enzyme to sugar mills[J]. Proc Queensland Soc Sugar Cane Technologists. 43th Conf, Watson Ferguson and Co, Brisbane, Queensland, Australia，1976:307-315.
[13] MADHU G L S, PRABHU K A. Application of dextranase in the removal of dextran from cane juice[J]. Internatonal Sugar Journal，1986，1025:136-138.
[14] GUILARTE B, CUERVO R. Aplicaction de dextranase[J]. Quimizacion de la industria azucarera ICINAZ-MINAZ. 1990, 43-60.
[15] 陈维钧，许斯欣. 甘蔗提汁[M]. 北京：中国轻工业出版社，2001:191-192.
[16] 杨光昭. 甘蔗制糖过程葡聚糖初探[J]. 四川制糖发酵，1992，19（3）：15-19.
[17] 程秀兰，孙晋武，王海燕，等. 焦曲霉右旋糖酐酶的纯化和性质[J]. 微生物学报，1992，32（3）：218-226.
[18] 程秀兰，孙晋武，杨敬，等.淡紫拟青霉右旋糖酐酶的形成条件[J]. 微生物学报，1992，32（5）：334-339.
[19] 孙晋武，程秀兰，严自正，等. 右旋糖酐酶产生菌的筛选及其酶学性质的比较研究[J].微生物学报，1988，28（1）：45-55.
[20] 朱慧霞，王雅洁，邓胜松，等. 绳状青霉菌发酵产右旋糖酐酶的条件研究[J]. 食品科学，2010，31（19）：288-291.
[21] 吴兆鹏，梁达奉，曾练强，等.毕赤酵母产α- 葡聚糖酶发酵工艺研究[J]. 粮油食品科技，2010，18（2）：29-31.

α-葡聚糖酶发酵工艺及其酶活性影响因素研究

Factors Affecting α-Dextranase Fermentation and Its Enzymatic Activity

RichHTML

PDF (PC)

可视化

摘要/Abstract

引用本文

使用本文

参考文献

相关文章 15

编辑推荐

Metrics

本文评价

[1]	王大将，张梦宇，岳正洋，周会玲. 绿原酸对苹果采后灰霉病抗性的影响[J]. 食品科学, 2021, 42(9): 177-183.
[2]	吴博华，蒋雪薇，张金玉，阮志强，梁胜男，陈永发，周尚庭. 促酱醪发酵芽孢杆菌的筛选及应用[J]. 食品科学, 2021, 42(6): 134-141.
[3]	周雅琪，黄佳茵，陈美玉，葛雨珺，李苑，胡亚芹. 亚牛磺酸对南美白对虾多酚氧化酶活性及酶构象的影响[J]. 食品科学, 2021, 42(4): 100-106.
[4]	王瑾，白羽嘉，冯作山，朱婉彤，曾禹睿慷，蒋莉莹. 链格孢侵染采后甜瓜病程相关蛋白基因表达及酶活性变化规律[J]. 食品科学, 2021, 42(14): 94-102.
[5]	乔锦莉，张妍，刘佩，郭良川，霍俊伟. 野生蓝果忍冬多酚鉴定及其抗氧化、降血糖活性[J]. 食品科学, 2021, 42(11): 47-55.
[6]	黄晓宁，刘晶晶，韩北忠，陈晶瑜. 基于酶学特性筛选大曲来源芽孢杆菌用于强化酿酒[J]. 食品科学, 2021, 42(10): 218-224.
[7]	刘连红，陈飞，管永祥，仇美华，张丽，戴传超. 枫香拟茎点霉B3生物转化花生废弃物合成白藜芦醇[J]. 食品科学, 2020, 41(6): 170-178.
[8]	张莉会，汪超，廖李，安可婧，胡建中，乔宇. 草莓干燥过程中酯类香气化合物及相关酶活性的变化[J]. 食品科学, 2020, 41(4): 172-177.
[9]	刘彦敏，沈璐，王康，严金平，伊日布斯. 传统大豆发酵食品中纳豆芽孢杆菌的分离及纳豆发酵[J]. 食品科学, 2020, 41(2): 208-214.
[10]	冯杰，冯娜，刘艳芳，唐庆九，周帅，刘方，张劲松，杨焱. 面向规模化应用的竹荪多糖液态深层发酵工艺优化[J]. 食品科学, 2020, 41(2): 181-187.
[11]	陈滢，李赤霞，陈玉娟，田元元，张萌，韩潆仪，王友升. 酿酒酵母环核苷酸磷酸二酯酶1的异源表达、分离纯化与活性检测[J]. 食品科学, 2020, 41(18): 71-76.
[12]	杨庆益，何彩梅，龚福明，唐小艳，董明杰，柳陈坚. 酸茶的研究现状与进展[J]. 食品科学, 2020, 41(1): 312-317.
[13]	刘刚，梁琪，宋雪梅，张炎. Plackett-Burman和Box-Behnken试验优化嗜热链球菌Q4F8产胞外多糖工艺[J]. 食品科学, 2019, 40(20): 136-143.
[14]	尚海涛，宣晓婷，崔燕，林旭东，俞静芬，凌建刚. 超高压激活鲜榨梨汁多酚氧化酶的酶学特性[J]. 食品科学, 2019, 40(19): 149-155.
[15]	刘远晓，李萌萌，卞科*，关二旗，刘远方. 热处理在小麦储藏与加工中的应用研究进展[J]. 食品科学, 2019, 40(13): 326-333.