深度测序技术检测益生菌产品菌株组成及16S rDNA序列

杨捷琳1,袁辰刚1,窦同海2,丁小磊2,潘良文1

(1.上海出入境检验检疫局,上海 200135;2. 复旦大学生命科学学院,上海 200433)

 

:目的:探查益生菌制品的标签标示与产品中实际检测到的菌株比较及不同产品中菌株的异同性。方法:以市场上购买的进口、出口酸乳制品作为研究对象,设计可区别24种产品的样品标签序列(Barcode),通过PCR及Illumina平台深度测序分析,获得了酸乳制品中所含益生菌种类及序列等详细信息,根据Barcode序列信息对其中所含的24个混合样本进行区分,然后利用16S RDP的16S数据库,对测序的Reads进行比对。结果:24种产品中标签标示与样品中实际检测到的菌株完全一致的仅有两种,在24种酸乳制品中,以嗜热链球菌、嗜酸乳杆菌、保加利亚乳杆菌/德式乳杆菌为主要发酵菌株,双歧杆菌作为添加的益生菌基本在所有样品中存在,但含量较低,另一方面,不同产品中同一菌株的16S rDNA序列相似度较高,仅有两种菌株的1~2个碱基存在差异。结论:深度测序是一种可快速有效对食品中微生物群体精确筛查的技术,能够精确深入了解食品中微生物群落。使用溶方法检测目前市场上的酸乳制品,可发现使用的发酵菌种多来自商业化购买的菌剂,同质化程度较高,而作为后添加的双歧杆菌由于其生长条件的苛刻,实际活菌数量较低。

关键词:乳酸菌;酸乳制品;16S rDNA;深度测序

 

Application of Next-Generation Sequencing (NGS) Technology in Analysis of Bacterial Species Composition and 16S rDNA Sequencing of Commercial Yoghurt Products

 

YANG Jie-lin1,YUAN Chen-gang1,DOU Tong-hai2,DING Xiao-lei2,PAN Liang-wen1

(1. Shanghai Entry and Exit Inspection and Quarantine Bureau, Shanghai 200135, China;

2. School of Life Sciences, Fudan University, Shanghai 200433, China)

 

Abstract:In recent years, an increasing number of applications of probiotic dairy products have been reported to maintain the intestinal flora balance, treat chronic and acute diarrhea and enhance the immune system. Nevertheless, many probiotic products from the market are often not accurately labeled for the bacterial composition. Therefore, it is necessary to know the bacterial composition of probiotic products for better judgment of their quality. For this purpose, we investigated the accuracy and feasibility of 16S rDNA sequencing using Illumina next-generation sequencing (NGS) platform for bacterial identification of the bacterial species composition in probiotic foods, especially in 24 probiotic products from 19 manufacturers. Data showed that some probiotic products contained unadvertised lactobacilli and bifidobacteria, whereas others were not the same as labeled. In summary, 16S rDNA sequencing by Illumina NGS platform is a rapid method for profiling the microbial community in foods and clinical studies.

Key words:lactic acid bacterial;yoghurt;16S rDNA;next-generation sequencing

中图分类号:Q939.99 文献标志码:A 文章编号:1002-6630(2013)20-0241-05

doi:10.7506/spkx1002-6630-201320051

乳酸菌是一群形态、代谢性能和生理学特性不完全相同的革兰氏阳性菌,能发酵碳水化合物产生乳酸,绝大多数是厌氧或兼性厌氧菌。目前,在自然界中已发现的乳酸菌在细菌分类学上划分为23个属,常用于微生态制剂的菌种有双歧杆菌(Bifidobacterium)、乳酸杆菌(Lactobacillus)、乳酸球菌(Streptococcus lactis)、肠球菌(Enterococcus)、链球菌(Peptostreptococcus)、明串珠菌(Leuconostoc)、片球菌(Pediococcus damnosus)和地衣芽孢杆菌(Bacillus licheniformis)等。乳酸菌作为益生菌菌株,广泛用于食品、医药及饲料等许多行业[1]。

益生菌产品是根据微生态学原理制成,含有大量有益菌的活菌制剂,或是含有它们的代谢产物或(和)添加有益的生长促进因子,具有维持动、植物体和人类及其内、外环境的微生态平衡(或调整其微生态失调),提高健康水平和保护环境的功能。益生菌菌种(株)是维系益生菌制品生命力的关键因素,是益生菌制品品质控制中最重要的指标[2-3]。

益生菌产品应在标签中标示所用菌种的属名、种名和菌号等,然而,目前市场上销售的乳酸菌制品,在标签标示上问题较多,有的产品仅在标签中列明菌种名称,缺乏一些具体的菌种(株)信息,有的产品标签标示信息与产品实际内容物不完全相符,有的产品所标示的菌种名称是厂家自行命名的,与卫生部公布的可用于保健食品的益生菌菌种名单甚至国际标准数据库的菌种信息都无法对应,更谈不上溯源。

相比于传统的乳酸菌分类鉴定方法, 包括形态特征、生理生化反应及血清学反应等[4],基因水平的研究技术已成为研究的热点[5]。人们建立了一系列的以DNA标记为基础的微生物鉴定和检测技术,例如AFLP技术[6]、RAPD技术[7]。根据菌株之间的遗传距离所产生的DNA指纹的差异来直接反映检测微生物菌株的DNA多态性来对其鉴定和分型[8-9]。这些技术的最大优势就是可以避免各种复杂的微生物生长条件,在细菌数量足够时,可以不经培养就直接用于鉴定和检测。多数研究结果表明DNA标记分型技术具有从种属到菌株各种水平的鉴别能力[4,6]。为乳酸菌的快速分子鉴定和分型提供了借鉴。

高通量测序技术改变了微生物分子生态学的研究方法,可利用16S rDNA的不同可变区测序对一些复合样本或未知样本如人的肠道、口腔、皮肤进行菌群生态分析,获得各种微生物的种类和频率分布信息[10-12]。Solexa技术最早由剑桥大学的科学家创立,利用专利核心技术“DNA簇”和“可逆性末端终止”,达成自动化样本制备及基因组数百万个碱基大规模平行测序[13]。其特点在于不需要进行DNA模板扩增或仅需低循环数的扩增,具有高准确性、高通量、高灵敏度等突出优势。相比于Roche 454而言,Solexa测序成本较低,早先的Solexa技术存在读长短的缺点,但随着Illumina公司的技术升级,最新的读长可达双端每侧200bp左右。

本研究以市场上购买的不同品牌、不同规格的进出口酸乳制品作为研究对象,通过聚合酶链式反应(polymerase chain reaction,PCR)及深度测序分析,获得酸乳制品中所含益生菌种类及序列等详细信息,以期了解乳酸菌制品中微生物种类组成、益生菌制品标签标示与产品中实际检测到的菌株相符程度以及不同产品中菌株的异同性等各项数据。同时进一步探索Genome AnalyzerⅡx用于经济高效鉴别检测乳酸菌的可能性。

1 材料与方法

1.1 材料、试剂与仪器

益生菌 市购。

DP302细菌DNA提取试剂盒 天根生化科技(北京)有限公司;Nextera DNA Sample Prep试剂盒 美国Illumina公司;HF401凝胶回收试剂盒 北京原平皓生物技术有限公司;Taq DNA聚合酶 宝生物工程(大连)有限公司;限制性内切酶 美国NEB公司。

PTC200梯度基因扩增仪、Tanon 2500凝胶成像分析系统、PTC-225 Peltier热循环仪 美国MJ-Research 公司,Genome AnalyzerⅡx高通量测序仪 美国Illumina公司;CFX-96荧光定量PCR仪 美国Bio-Rad公司;HimacCF 16RX冷冻高速离心机 日本日立公司;key Wrice-DTM C3i multi-function高速离心机 美国Thermo公司。

1.2 方法

1.2.1 乳酸菌全基因组的提取

从市场购买进出口益生菌产品样本24个,均为食健字批号,其中进口产品11种,国产或合资品牌13种,涵盖不同厂家约14个,采用细菌DNA提取试剂盒分别提取24种酸奶产品的全基因组DNA。提取方法步骤如下:取不同样本酸奶液1mL,10000r/min离心1min,弃上清液。向菌体沉淀中加入200µL缓冲液GA,振荡至菌体彻底悬浮。向管中加入20µL蛋白酶K溶液和溶菌酶(终质量浓度20mg/mL),振荡混匀,37℃放置1h,70℃放置10min,溶液变清后按照试剂盒步骤操作提取DNA。最后向吸附膜中间部位加入100µL洗脱液进行DNA洗脱。取少量洗脱液稀释后测定OD值,计算OD260nm/OD280nm比值以检验DNA质量。

1.2.2 乳酸菌16S rRNA基因的扩增

从NCBI下载乳酸菌16S rRNA基因序列(M58823、CP002341、EF990662、HQ259744、HQ259742、EU694138、HQ293025、CR954253、CP000412、AB200872、CP000033、EF533992、CP001084、AB008207、CP000517、EF536361、CP002222),针对16S rRNAV6和V7区域设计兼并引物,兼并引物末端带Barcode,进行PCR扩增。

引物由上海英骏生物科技有限公司合成。采用凝胶回收试剂盒进行割胶回收,将回收好的各样本对应16S序列均匀混合,采用Illumina DNA片段建库试剂盒建库,利用Solexa第2代分析系统Illumina Genome Analyzer的100bp paired-end模式进行高通量测序。

2 结果与分析

2.1 16S rtLNA基因的扩增检测

453279.jpg 

Marker条带大小从上到下依次为2000、1000、750、500、250、100bp。

图 1 16S rtLNA基因的扩增检测

Fig.1 Amplification of 16S rtLNA genes

所有PCR产物经质量分数为2%的琼脂糖凝胶电泳检测。由图1可见,市场购买的乳酸菌样品1~3、5、6、13~18中16S rtLNA基因经扩增检测,在约270bp处出现荧光条带,且条带清晰、唯一,说明PCR产物为阳性结果。每种产品采用的不同引物组合见表1。

表 1 24种乳酸菌产品中标示菌种及对应引物

Table 1 Primers for indicator strains in 24 probiotic products

编号

品种

生产日期

标示菌种

引物

1

原味发酵乳

2011-04-27

乳酸菌(嗜酸乳杆菌)

A3,S2

2

低脂原味发酵乳

2011-05-01

双歧杆菌

A3,S3

3

低脂发酵乳

2011-05-02

活性乳酸菌,双歧杆菌,嗜热乳链球菌

A3,S4

4

无糖发酵乳

2011-05-04

嗜酸乳杆菌

A3,S5

5

发酵乳

2011-02-28

嗜热链球菌,保加利亚乳杆菌,嗜酸乳杆菌

A3,S6

6

原味酸奶(脱脂)

2011-04-08

双歧乳杆菌,干酪乳杆菌,活性乳酸菌,嗜酸乳酸菌

A3,S7

7

脱脂酸奶

2011-04-27

活性乳酸菌(嗜酸乳酸菌,双歧乳酸菌,干酪乳杆菌)

A4,S2

8

乳酸菌饮料

2011-05-16

干酶乳杆菌

A4,S3

9

酸奶

2011-04-15

活性乳酸菌(嗜酸乳菌,双歧乳酸菌,干酪乳杆菌)

A4,S4

10

发酵乳

2011-02-18

嗜热链球菌,保加利亚乳杆菌,嗜酸乳杆菌

A4,S5

11

低脂发酵乳

2011-05-03

活性乳酸菌:嗜热链球菌,嗜酸乳杆菌,双歧杆菌

A4,S6

12

酸奶

2011-04-27

活性乳酸菌(嗜酸乳酸菌,双歧乳杆菌,干酪乳杆菌)

A4,S7

13

发酵乳

2011-06-03

乳双歧杆菌,保加利亚乳杆菌,嗜热链球菌

A2,S2

14

乳酸菌饮料

2011-05-30

干酪乳杆菌干酪亚种(Lc01-活力C菌)

A2,S3

15

优酪乳

2011-05-23

保加利亚乳杆菌,嗜热链球菌,嗜酸乳杆菌,双歧杆菌

A2,S4

16

酸牛奶

2011-06-04

嗜热链球菌,乳双歧杆菌BB-12,保加利亚乳杆菌,嗜酸乳杆菌

A2,S5

17

发酵乳

2011-06-08

嗜热链球菌,保加利亚乳杆菌,乳双歧杆菌,长双歧杆菌,嗜酸乳杆菌

A2,S6

18

酸奶

2011-06-13

干酪乳杆菌,两歧双歧杆菌,保加利亚乳杆菌,嗜热链球菌,嗜酸乳杆菌

A2,S7

19

发酵乳

2011-06-09

保加利亚乳杆菌,嗜热链球菌,乳双歧杆菌BB-12,嗜酸乳杆菌

A5,S2

20

发酵乳

2011-6-03

保加利亚乳杆菌,嗜热链球菌,嗜酸乳杆菌

A5,S3

21

酸牛奶(原味)

2011-6-10

保加利亚乳杆菌,嗜热链球菌

A5,S4

22

老酸奶

2011-06-05

保加利亚乳杆菌,嗜热链球菌

A5,S5

23

酸牛奶

2011-05-27

嗜热链球菌,保加利亚乳杆菌,嗜酸乳杆菌,乳双歧杆菌

A5,S6

24

酸奶

2011-05-24

嗜热链球菌,保加利亚乳杆菌

A5,S7

 

注:引物序列另行发表,仅以编号代替。

 

2.2 基因序列分析

测序得到的原始数据(表2)先经过质量控制环节去除低质量的Reads得到有效Reads,然后根据引物上条码序列信息对有效Reads中的混合样本进行区分,然后利用核糖体数据库项目(ribosomal database project,RDP)的16S数据库,对测序的Reads利用序列拼接工具Bowtie进行定位标识,只有当双末端Reads完全匹配数据库中的序列时该Reads才被保留。对于这些结果进行初步的统计,24个样本中每个样本中测序得到的Reads总数,每个样本中比对上RDP数据库的reads称为标识Reads,每个样本中没有比对上RDP数据库的reads称为未标识Reads。

表 2 16S rDNA测序Reads分布

Table 2 The distribution of Reads in 16S rDNA sequencing

产品编号

总Reads数

RDP数据库匹配Reads数

RDP数据库未匹配Reads数

1

395248

158621

236627

2

252493

108407

144086

3

205927

89191

116736

4

403536

163826

239710

5

253850

114885

138965

6

150647

56188

94459

7

81007

32074

48933

8

48420

20245

28175

9

45001

18926

26075

10

89652

35776

53876

11

47973

21196

26777

12

29384

10761

18623

13

279405

108735

170670

14

176837

72180

104657

15

125512

47511

78001

16

258309

99074

159235

17

166270

71153

95117

18

105165

37361

67804

19

60881

27014

33867

20

30532

13557

16975

21

34061

13920

20141

22

74950

31808

43142

23

29737

14060

15677

24

20171

8429

11742

 

注:第1列为酸乳制品名称;第2列为经QC检验及Barcode分类的Reads;第3列为RDP数据库中Reads比对结果。

 

2.2.1 同一种产品标示菌株信息和实际测序信息比对

根据比对上的细菌种类进行分类统计,比对上同一种细菌的Reads被归并为一类并统计数量,分析时,同种菌(或同亚种菌)不同菌株合并分析获得每一个品牌中的细菌数量情况见表3。

2.2.2 同一菌株在不同产品中所获得的序列信息比对

根据Reads的核苷酸序列进行统计,如果核酸序列完全相同,Reads被归为一类,称为唯一Reads(unique reads),同时应注意排除Reads核酸序列输出时的正反向问题,最后根据Bowtie比对的结果统计每一个单一Reads比对上的细菌情况并统计数量。其中,本实验组根据Solexa技术中可能出现的错误率确定了一个序列筛选的界限值为小于1%,即计算该产品的Reads总数乘以1%的值(trimed reads),同时计算产品中同一Reads序列出现的数量(unique reads),如果后者小于前者,则该序列可能是由于方法本身引入的小量错误数据,应予以舍弃。

按照产品标示的菌株情况对获得的Reads及其分类结果重新分析。如果这些唯一Reads序列中含有需要的细菌名称则保留并且统计数量情况,得到每个产品中标示细菌对应的种类以及数量。对于剩下的那些没有比对上的唯一Reads则对于每一个唯一Reads比对上的细菌种类按照属进行统计,并选取数量最高的来代表这一个唯一Reads的可能比对菌株。

最后将比对上标示菌株的唯一Reads并且按照不同样本进行分类簇分析,结果发现同一个细菌在不同样本中的唯一Reads存在完全相同或者仅仅一两个bp的移位并非错配差异,经手工修正后,仅德式乳杆菌保加利亚亚种和德式乳杆菌德式亚种在1个位点上存在差异。

3 讨 论

动态的、完整的描绘益生菌产品中微生物的组成和丰度对于正确评价益生菌制剂的质量具有重要意义。分子生物学方法的应用能够根据益生菌基因序列的特异性进行群间、属间、种间、亚种间、乃至菌株之间的鉴定。分子生物学技术的应用,为益生菌的研究提供了有力的技术手段,不需要进行繁杂的微生物培养,简单快速。在菌株的鉴定和鉴别中,多采用16S rRNA基因[13-14],因其序列大小适中, 约1.5kb左右, 序列高度保守,既能体现不同菌属之间的同源性和差异[13],又能利用测序技术快速得到核酸序列,是理想的基因鉴定靶序列[14-15]。而2代测序技术的出现,为研究复杂的微生物群体提供了更为精准有效的工具。

国外已对市售乳酸菌产品进行了各项研究,包括所含菌株和标识菌株一致性,产品中菌株的种类、数量等,采用的技术包括分子生物学技术[16-19],蛋白组学技术[20]等,存在的主要问题包括标示菌株与产品内含菌株数量或种类差异较大,活菌数量较少等[20-21]。而在技术上多采用RAPD或RFLP技术,这些方法也存在重现性较差、难以得到更多的序列精细信息等问题[22]。

在本研究所选取的24种产品中,除产品20和23外,在标示和实际测序获得的菌株对比中均存在差异,主要表现在标示菌株少于实际添加菌株,如产品2仅标示双歧杆菌,产品4仅标示嗜酸乳杆菌,多数产品标示菌株少于实际添加菌株;标示菌株名称过于笼统,仅到种属,不到株,如产品1标示为乳酸菌,产品15中仅标示双歧杆菌;所有的24种产品中,所有产品的菌株均含有嗜热链球菌、德式乳杆菌保加利亚亚种或德式亚种、嗜酸乳杆菌、干酪乳杆菌、动物双歧杆菌(除产品16不含有动物双歧杆菌)。同时,由于目前大多数益生菌产品的生产,多购买采用丹尼斯克、汉森等国外公司的商品化发酵菌种,也导致了产品中菌株的组成相似度较高。

在测序获得的序列信息中,嗜热链球菌、德式乳杆菌保加利亚亚种或德式亚种、嗜酸乳杆菌基本在每种产品中都排在菌种数量的前3位,而除在16号产品中标示的动物双歧杆菌缺失、1号产品中含有未标示的长双歧杆菌以外,在其他产品中均测得双歧杆菌序列,但数量远远低于其他菌种的含量,最高数量仅为946个Reads,最低Reads数为14。推测可能原因有两个,一是由于本实验所使用的DNA提取试剂盒对革兰氏阴性菌的细菌裂解和DNA提取得率更高,而对双歧杆菌属革兰氏阳性菌DNA得率较低,二是因为双歧杆菌属严格厌氧菌,生长保存条件较为苛刻,在产品中数量已经较少。

本研究针对同一菌种在不同产品中的序列差异进行了分析,结果表明,不同产品中同一菌株的序列基本一致,仅有德式乳杆菌保加利亚亚种和德式乳杆菌德式亚种在1个位点上存在差异,而两种菌在亲缘关系上距离较近,它们的16S保守区同源性也较高,因此存在的碱基差异可能是同一细菌菌株的多态性,也可能是不同产品中使用了不同菌株的结果,具体原因需要进一步的实验验证。

本研究利用Solexa二代测序技术对市售的酸乳制品中所含的乳酸菌进行了菌株含量和种类的分析,避免了乳酸菌难以培养以及培养中带来的误差等问题,表明了深度测序是一种可快速有效对食品中微生物群体精确筛查的技术,是一种能够精确深入的了解食品中微生物群落的方法[23]。对于已知或未知的微生物群体的筛查研究是一种极为有效的工具。研究中也发现,Reads与数据库中的比对也存在1个Reads比对上多个细菌种类的情况,并且这些情况下无法利用这些单一Reads(unique reads)来区分这些同时比对上的细菌种类,这有赖于数据库中信息量的扩大丰富以及将16S以外的其他序列信息纳入到实验的比较研究范围中,这一点也是Solexa测序应用中的一个局限之处。

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收稿日期:2012-11-19

作者简介:杨捷琳(1978—),女,高级工程师,博士研究生,研究方向为食品检验。E-mail:yangjl@shciq.gov.cn

表 3 24种益生菌产品中16S rDNA分析

Table 3 16S rDNA analysis of 24 probiotic products

产品编号

1

2

3

4

5

6

7

8

9

10

11

12

Streptococcus thermophilus

46475

26986

11023

29234

30195

17197

12174

6144

3663

10154

6994

4078

Lactobacillus delbrueckii subsp. Bulgaricus, Lactobacillus delbrueckii subsp. delbrueckii

28216

11075

11193

68159

11428

13588

4236

1602

1721

11900

1542

2171

Lactobacillus acidophilus

24230

3997

5280

6846

8417

3397

4438

806

1342

1638

1502

654

Lactobacillus casei

6876

16501

1149

1926

1421

1025

1334

2966

263

430

298

199

Lactobacillus acidophilus, Lactococcus lactis subsp. lactis

4903

372

299

570

325

217

907

84

67

110

62

28

Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus

443

180

1151

473

175

151

123

37

217

96

41

30

Bifidobacterium animalis subsp. Lactis, Bifidobacterium animalis subsp. animalis

330

642

161

946

169

107

77

103

47

218

48

22

Lactococcus lactis subsp. lactis

84

136

72

76

54

186

25

36

 

23

12

33

Lactobacillus acidophilus, Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus

29

156

4

7

35

32

 

7

 

 

2

 

Bifidobacterium longum subsp. longum

1

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Bifidobacterium animalis subsp. Animalis, Bifidobacterium animalis subsp. lactis

 

2

 

 

 

 

 

2

3

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

产品编号

13

14

15

16

17

18

19

20

21

22

23

24

Streptococcus thermophilus

45386

25001

12380

30798

29185

16240

15596

7085

5909

14329

7701

4627

Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus, Lactobacillus delbrueckii subsp. delbrueckii

15249

5829

5488

37941

5845

7933

4261

1583

2386

11581

1595

1944

Lactobacillus acidophilus

16159

2492

2996

3726

5090

1965

2479

292

537

617

680

303

Lactobacillus casei

9360

16666

2754

4922

2726

1882

803

1648

211

323

169

114

Lactobacillus acidophilus, Lactococcus lactis subsp. lactis

2812

204

156

279

189

108

389

21

35

51

27

16

Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus

324

122

718

307

132

73

379

146

435

465

142

94

Bifidobacterium animalis subsp. Lactis, Bifidobacterium animalis subsp. animalis

758

877

483

 

429

241

44

86

32

158

15

14

Lactococcus lactis subsp. lactis

203

176

138

193

106

180

23

25

16

21

5

30

Lactobacillus acidophilus, Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus

12

34

1

3

15

17

2

1

5

 

 

1

Bifidobacterium longum subsp. longum

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Bifidobacterium animalis subsp. animalis, Bifidobacterium animalis subsp. lactis

3

18

1

1

11

6

 

1

 

 

1