蛋清肽的制备及其对保加利亚乳杆菌促生长的作用 任 静,孙 波*,赵 晓,孙欣瑶,齐 玉,李海鑫,樊 庆,孙 盛 (东北农业大学食品学院,黑龙江 哈尔滨 150030)
摘 要:研究Alcalase碱性蛋白酶酶解蛋清制备蛋清肽和蛋清肽对保加利亚乳杆菌生长的影响。结果表明:通过 关键词:蛋清肽;保加利亚乳杆菌;促生长
Preparation of Egg White Peptide and Its Growth-Promoting Activity for Lactobacillus bulgaricus
REN Jing, SUN Bo*, ZHAO Xiao, SUN Xin-yao, QI Yu, LI Hai-xin, FAN Qing, SUN Sheng (College of Food Science, Northeast Agricultural University, Harbin 150030, China)
Abstract: Egg white was hydrolyzed by Alcalase to prepare egg white peptide in this study. The optimal hydrolysis parameters were determined by Box-Behnken experimental design as 4.5 g/100 mL substrate concentration, pH 9.0, 64 ℃ and 5.0% [E]/[S] Key words: egg white peptide; Lactobacillus bulgaricus; growth-promoting 中图分类号:TS201.3 文献标志码:A 文章编号:1002-6630(2014)07-0170-06 doi:10.7506/spkx1002-6630-201407034 保加利亚乳杆菌作为我国卫生部列出的9类益生菌之一,其在食品、医疗保健等领域的应用越来越广[1-3]。然而,国际和国内规定中声明,益生菌活菌数不得少于106 CFU/mL或106 CFU/g,否则不能产生渴望的健康诉求[4],因此,如何促进保加利亚乳杆菌快速生长、提高保加利亚乳杆菌的活菌数量则成为大规模酶制剂生产中的一项重要任务。 蛋清肽是蛋清经蛋白酶适度水解生成的多肽混合物,蛋清中含有丰富的蛋白质和人体必需的多种氨基酸,且氨基酸组成配比均衡性好,是营养学界公认的机体利用率最高、最优质的蛋白质[5-6]。水解后的蛋清肽不仅分子质量小,利于吸收,且许多具有独特序列的肽还具有特殊的生理功效[7-11]。近年来,国内外已有相关研究报道乳蛋白、绿豆蛋白、大豆蛋白、酪蛋白、鱼蛋白来源的肽具有不同程度促进乳酸菌生长的影响[12-18],然而,有关蛋清肽对乳酸菌生长的影响鲜见报道。 本实验以鸡蛋蛋清为原料,采用Alcalase碱性蛋白酶酶解制备蛋清肽,利用Box-Behnken响应面分析法优化蛋清肽制备工艺,并进一步探讨蛋清肽对保加利亚乳杆菌生长的影响,旨在为提高保加利亚乳杆菌的活菌数量、促进蛋清肽在乳制品生产中的应用提供一定的理论依据和技术支持。 1 材料与方法 1.1 材料与试剂 鸡蛋 市售。 Alcalase碱性蛋白酶(24万U/mL) 诺维信生物制品有限公司;Sephadex G-25 美国Pharmacia公司。 1.2 菌种与培养基 保加利亚乳杆菌(Lactobacillus bulgaricus) 东北农业大学食品学院保藏。 MRS培养基(g/L):蛋白胨10.0、葡萄糖20.0、牛肉膏10.0、酵母膏5.0、无水乙酸钠5.0、柠檬酸二铵2.0、硫酸镁0.58、硫酸锰0.28、琼脂15.0、吐温-80 1.0 mL/L,pH 6.2~6.4,121 ℃灭菌15 min。 1.3 仪器与设备 HYP-Ⅱ型消化炉 上海纤检仪器有限公司;JJ-1型电动搅拌器 常州国华电器有限公司;HD-1型核酸蛋白检测仪 金坛市盛蓝仪器制造有限公司;PHS-3C型精密pH计 上海精密科学仪器有限公司;CJ-2D型超净工作台 天津泰斯特仪器有限公司;TDZ4低速离心机 上海平凡仪器仪表有限公司;DHP-9162恒温培养箱、HWS-24电热恒温水浴锅 上海齐欣科学仪器有限公司;722可见分光光度计 天津市普瑞斯仪器有限公司。 1.4 方法 1.4.1 蛋清肽的制备 称取一定量搅打后的鸡蛋蛋清,加水稀释至一定蛋白质质量浓度后,沸水浴加热处理15 min,加入Alcalase碱性蛋白酶酶解,酶解后95 ℃保温10 min灭酶,冷却,4000 r/min离心30 min,上清液即为蛋清肽。 1.4.2 水解度的测定 采用茚三酮比色法[19]测定。 1.4.3 蛋清肽分子质量测定 采用凝胶柱层析法测定蛋清肽的分子质量分布。层析条件为:Sephadex G-25柱(2.6cm×50cm),流速1.0mL/min,0.1mol/L pH7.0磷酸缓冲液洗脱;温度23 ℃;检测波长280nm。 取苯丙氨酸(Mw=168u)、还原型谷胱甘肽 1.4.4 保加利亚乳杆菌活菌数测定 参照GB/T 4789.35—2010《食品微生物检验 食品中乳酸菌检验》方法测定。 1.4.5 滴定酸度测定 参照GB 5413.34—2010《乳和乳制品酸度的测定》方法测定。 2 结果与分析 2.1 蛋清肽酶解工艺条件的优化 2.1.1 酶解pH值对水解度的影响 pH值是酶促反应的重要参数,其过高或过低均会抑制酶的活性,进而降低反应速率。底物质量浓度4.0 g/100 mL、酶解温度60 ℃、加酶量([E]/[S])4.0%、酶解3h,研究pH值对蛋清肽水解度的影响,结果如图1所示,pH值以9.0为宜。
图 1 酶解pH值对蛋清肽水解度的影响 Fig.1 Effect of pH on the degree of hydrolysis 2.1.2 酶解温度对水解度的影响 底物质量浓度4.0 g/100 mL、加酶量4.0%、酶解pH9.0、酶解3h,研究酶解温度对蛋清肽水解度的影响,结果如图2所示,当温度低于65 ℃时,随着酶解温度的升高,水解度也随之增加,但当酶解温度大于65 ℃时,随着酶解温度的升高,水解度显著下降,可见,过高的温度破坏了酶的活性中心,改变了酶的构象,进而导致酶切作用迅速降低,因此,本实验中,温度以65 ℃为宜。
图 2 酶解温度对蛋清肽水解度的影响 Fig.2 Effect of hydrolysis temperature on the degree of hydrolysis 2.1.3 底物质量浓度对水解度的影响
图 3 底物质量浓度对蛋清肽水解度的影响 Fig.3 Effect of substrate concentration on the degree of hydrolysis 底物质量浓度过高,加热变性后蛋白凝固而形成凝胶状,不利于酶的作用;底物质量浓度过低,又会降低生产效率。加酶量4.0%、酶解pH9.0、酶解温度65 ℃、酶解3h,研究底物质量浓度对蛋清肽水解度的影响,结果如图3所示,底物质量浓度以4.5 g/100 mL为宜。 2.1.4 加酶量对水解度的影响 加酶量越大,其与底物蛋白接触的几率越大,水解度也会随之增加,但加酶量过大则会造成资源浪费,成本增加。底物质量浓度4.5 g/100 mL、酶解pH9.0、酶解温度65 ℃、酶解3h,研究加酶量对蛋清肽水解度的影响,结果如图4所示,加酶量以6.0%为宜。
图 4 加酶量对蛋清肽水解度的影响 Fig.4 Effect of enzyme concentration on the degree of hydrolysis 2.1.5 响应面法优化蛋清肽酶解工艺 表 1 响应面分析试验设计及结果 Table 1 Experiment design and results for response surface analysis
在单因素试验基础上,选取蛋清肽酶解工艺中的4个因素,即酶解pH值、酶解温度、底物质量浓度、加酶量为自变量,分别用x1、x2、x3、x4表示,以水解度Y为响应值,采用Design-Expert 7.0软件中的Box-Behnken响应面设计原理设计响应面分析试验,其结果见表1。 通过统计分析软件Design-Expert 7.0对表1中试验数据进行二次多项式回归拟合,得二元回归方程为: Y=21.06-0.037x1-0.42x2-0.23x3-2.10x4-0.71x1x2+ 表 2 模型方差分析 Table 2 Analysis of variance for the response surface regression model
注:**. P<0.01,差异极显著。
对模型进行方差分析,结果见表2,方程因变量与自变量之间的线性关系明显,该模型显著(P<0.01),失拟项不显著,且该模型相关系数R2=99.81%,校正决定系数R2Adj =99.62%,表明该模型与实验拟合良好,自变量与响应值之间线性关系显著,可用于该反应的理论推测。由F检验得各因子的贡献率依次为:x4>x2>x3>x1,即加酶量>酶解温度>底物质量浓度>酶解pH值。由显著性分析可知,x2、x3、x4、x1x2、x1x4、x2x3、x2x4、x12、x22、x32、x42项达到了极显著的水平。
图 5 各因素两两相互作用对蛋清肽水解度影响的响应面和等高线图 Fig.5 Response surface and contour plots for the pairwise effects of four process conditions on the degree of hydrolysis of egg white 由图5各因素对蛋清肽水解度影响的响应面和等高线图可知,酶解pH值和酶解温度、酶解pH值和加酶量、酶解温度和底物质量浓度、酶解温度和加酶量之间交互作用显著。 2.1.6 验证实验 应用响应面法对回归模型进行分析,确定蛋清肽酶解的最佳工艺条件为:酶解pH8.99、酶解温度63.87 ℃、底物质量浓度4.49 g/100 mL、加酶量5.22%;综合考虑实际可操作性,将蛋清肽酶解的最佳工艺条件修整为:酶解pH9.0、酶解温度64 ℃、底物质量浓度4.5 g/100 mL、加酶量5.0%。在最优条件下对响应面法优化的结果进行验证,3次平行实验水解度的平均值为21.89%,接近Design Expert 7.0软件得到的预测值21.93%,由此证明此响应面试验参数准确,实验模式合理。 2.1.7 蛋清肽分子质量的测定结果 一定分子质量的物质通过葡聚糖凝胶柱的时间或洗脱体积与分子质量的对数呈线性关系,分子质量越大,其通过凝胶柱的时间越短,洗脱体积越小[20]。按照1.4.3节所述的方法进行实验,以各标准品分子质量对数为横坐标(x),洗脱体积为纵坐标(y)绘制分子质量标准曲线,其回归方程为y=-34.01x+185.6(R2 = 0.9987),表明二者线性关系良好,可以用于分子质量的测定。 表 3 不同酶解时间下蛋清肽的出峰体积及分子质量 Table 3 Elution volumes and molecular weights of egg white peptides at different time points of hydrolysis
图 6 不同酶解时间下蛋清肽的洗脱吸收曲线 Fig.6 Elution curves of egg white peptides at different time points of hydrolysis 如表3和图6所示,未水解的蛋清肽的出峰体积较小,为44mL,其分子质量较大,为14454u;随着酶解时间的延长,洗脱体积在44mL处峰高越来越小,且最高峰逐渐后移,表明高分子质量蛋白逐渐被水解,分子质量逐渐变小;当酶解时间大于3h时,随着酶解时间的延长,其最高峰处的洗脱体积变化不大,最高峰的洗脱体积在77~78mL之间,分子质量在1513~1445u。 2.2 蛋清肽对保加利亚乳杆菌生长的影响 2.2.1 蛋清肽分子质量对保加利亚乳杆菌生长的影响 肽功能性与分子质量密切相关[21]。本实验将已活化的保加利亚乳杆菌按体积分数3%接种量接种于MRS液体培养基中,并分别加入1%最佳酶解工艺条件下不同酶解时间(0、1、2、3、4h)的蛋清肽,同时以乙酸铵(无机氮源)作为对照组,使各组培养基的含氮量相同,37 ℃培养24h后测定各组发酵液的活菌数及滴定酸度,以此来初步研究蛋清肽分子质量对保加利亚乳杆菌生长的影响。
图 7 酶解时间对保加利亚乳杆菌生长的影响 Fig.7 Effect of egg white peptides at different time points of hydrolysis on the growth of Lactobacillus bulgaricus 由图6、7可知,蛋清肽可显著促进保加利亚乳杆菌的生长,且随着酶解时间的延长,小分子质量肽段逐渐增多,其对保加利亚乳杆菌的促生长作用逐渐增强,但当酶解时间大于3h时,小分子质量肽段含量几乎不变,其促生长作用也增加缓慢,可见,肽分子质量越小,其促生长作用越强,这与Lucas等[13]的研究结果一致。针对本实验蛋清肽促生长作用而言,蛋清肽的酶解时间以3h为宜,此条件下制得的蛋清肽主要为分子质量集中于1513u的肽段(表3)。 2.2.2 蛋清肽添加量对保加利亚乳杆菌生长的影响
图 8 蛋清肽添加量对保加利亚乳杆菌生长的影响 Fig.8 Effect of egg white peptide concentration on the growth of Lactobacillus bulgaricus 本实验在保加利亚乳杆菌接种量为3%的MRS液体培养基中,分别加入1%、2%、3%、4%、5%最佳酶解工艺条件下酶解3h的蛋清肽,以未添加蛋清肽作为对照,37 ℃培养24h后,分别测定各组发酵液中的活菌数及滴定酸度,结果如图8所示,蛋清肽的添加量显著影响保加利亚乳杆菌的生长。当蛋清肽添加量为1.0%~3.0%时,随着添加量的增加,保加利亚乳杆菌的活菌数及滴定酸度增加;当蛋清肽添加量为3.0%时,保加利亚乳杆菌的活菌数最多,为5.0×108 CFU/mL,与对照组(2.8×107 CFU/mL) 3 结 论 本实验以鸡蛋蛋清为原料,采用Alacase碱性蛋白酶酶解制备蛋清肽,确定其最佳制备工艺为:酶解pH9.0、酶解温度64 ℃、底物质量浓度4.5 g/100 mL、加酶量5.0%。此条件下,酶解3h后其水解度达21.89%。 研究了蛋清肽对保加利亚乳杆菌生长的影响,结果表明,蛋清肽可显著促进保加利亚乳杆菌生长,且随着肽分子质量的减小,其促生长作用越强;此外,实验中发现,蛋清肽对保加利亚乳杆菌的促生长作用存在最适浓度范围,当添加3.0%、酶解3h的蛋清肽时(分子质量主要集中在1513u),其对保加利亚乳杆菌的促生长作用最强,与未添加相比,可使活菌数提高一个数量级。 蛋清肽制备工艺简单、操作方便,且廉价的蛋清肽可显著促进保加利亚乳杆菌生长,降低生产成本,提高经济效益,这不仅为保加利亚乳杆菌菌剂的大规模生产提供了一个新的途径,同时也拓宽了蛋清肽的应用领域,提高了鸡蛋的附加值,其应用前景广阔。 参考文献: [1] STAVROS P, ANN F, KATERINA K, et al. Application of Kluyveromyces marxianus, Lactobacillus delbrueckii ssp. bulgaricus and L. helveticus for sourdough bread making[J]. Food Chemistry, 2008, 106(3): 985-990. [2] 白卫东, 赵文红, 梁桂凤, 等. 保加利亚乳杆菌的特性及其应用[J]. 中国酿造, 2009, 28(8): 10-14. [3] 张华江, 迟玉杰, 孙波. 全蛋液酶改性工艺及蛋乳发酵酸奶的研制[J]. 东北农业大学学报, 2008, 39(2): 242-248. [4] STANTON C, GARDINER G, MEEHAN H, et al. Market potential for probiotics[J]. American Journal Clinical Nutrition, 2001, 73(2): 476-483. [5] 杨万根, 王璋, 徐玉娟, 等. 蛋清利用研究进展[J]. 食品科学, 2009, 30(23): 456-459. [6] ARZENI C, PEREZ O E, PILOSOF A M. Functionality of egg white proteins as affected by high intensity ultrasound[J]. Food Hyrocolloids, 2012, 29(2): 308-316. [7] YU Zhipeng, YIN Yongguang, ZHAO Wenzhu, et al. Novel peptides derived from egg white protein inhibiting alpha-glucosidase[J]. Food Chemistry, 2011, 129(4): 1376-1382. [8] 张建林, 王海滨. 蛋清肽的功能特性及制备技术研究进展[J]. 肉类工业, 2010(6): 53-55. [9] YOU S J, UDENIGWE C C, ALUKO R E, et al. Multifunctional peptides from egg white lysozyme[J]. Food Research International, 2010, 43(3): 848-855. [10] YAZDI M M, ASOODEH A, CHAMAN J. A novel antioxidant and antimicrobial peptide from hen egg white lysozyme hydrolysates[J]. Journal of Functional Foods, 2012, 4(1): 278-286. [11] 任静, 孙波, 管华, 等. 蛋清肽对酸奶发酵特性及酸奶品质的影响[J]. 食品与发酵工业, 2012, 38(12): 174-177. [12] 白凤翎, 李晓东, 廖玲, 等. 乳清蛋白酶解物促嗜酸乳杆菌增殖作用研究[J]. 食品科学, 2010, 31(9): 161-165. [13] LUACS A, SODINI I, MONNET C, et al. Probiotic cell counts and acidification in fermented milks supplemented with milk protein hydrolysates[J]. International Dairy Journal, 2004, 14(1): 47-53. [14] 卢晓明, 杨海莺, 任发政, 等. 绿豆和乳清蛋白水解物对双歧杆菌促生长条件的研究[J]. 食品研究与开发, 2010, 31(6): 5-9. [15] 万春艳, 赵谋明, 赵海锋. 大豆蛋白水解物对酿酒酵母生长和发酵性能的影响[J]. 食品与发酵工业, 2011, 37(9): 50-53. [16] 胡志和, 区翠颜, 朱利民, 等. 酪蛋白水解物对瑞士乳杆菌生长的影响[J]. 食品科学, 2010, 31(23): 188-193. [17] 赵红宇, 张兰威. 不同蛋白水解物对益生菌在乳中生长的影响[J]. 中国乳品工业, 2006, 34(2): 16-18. [18] SAFARI R, MOTAMEDZADEGAN A, OVISSIPOUR M, et al. Use of hydrolysates from yellowfin tuna (Thunnus albacares) heads as a complex nitroge source for lactic acid bacteria[J]. Food and Bioprocess Technology, 2012, 5(1): 73-79. [19] 赵新淮, 冯志彪. 蛋白质水解物水解度的测定[J]. 食品科学, 1994, 15(11): 65-67. [20] 金嫘, 王晶, 李新华. Alcalase 碱性蛋白酶酶解蛋清制备抗氧化活性肽[J]. 食品研究与开发, 2009, 30(6): 59-62. [21] LIU Qian, KONG Baohua, XIONG Youling L., et al. Antioxidant activity and functional properties of porcine plasma protein hydrolysate as influenced by the degree of hydrolysis[J]. Food Chemistry, 2010, 118(2): 403-411.
收稿日期:2013-03-04 作者简介:任静(1989—),女,硕士研究生,研究方向为食品微生物与发酵工程。E-mail:renjing114@163.com *通信作者:孙波(1962—),男,副教授,硕士,研究方向为食品微生物与发酵工程。E-mail:bosun114@163.com |
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