离子色谱法-积分安培检测器测定
葡萄酒中的天然糖

马甲民1,2,崔 鹤1,*,张文皓1,李 立3,董丽臻1,李慧新1

(1.山东出入境检验检疫局,山东 青岛 266001;2.青岛大学,山东 青岛 266071;

3.中国检验检疫科学研究院,北京 100123)

 

摘 要:建立测定葡萄酒中常见的8 种天然糖(阿拉伯糖、葡萄糖、木糖、果糖、L-山梨糖、蔗糖、异麦芽酮糖和麦芽糖)的离子色谱分析方法。以淋洗液发生器电解产生的KOH溶液梯度淋洗,在CarboPac PA20高效阴离子交换柱上,8 种天然糖可以在30 min内完成分离。使用积分安培检测器进行测定,8 种糖的检出限(进样量10 μLRSN=3)分别为0.007、0.004、0.005、0.005、0.003、0.014、0.016 mg/L和0.020 mg/L,且均具有较宽的线性范围(0.06~30 mg/L)。样品测定的相对标准偏差在4.9%~8.7%之间,8 种糖的加标回收率在81.5%~95.1%之间;本方法检测糖简便快捷、分离效果好、无需衍生、灵敏度高,适用于葡萄酒中的8 种常见天然糖组分的分析。

关键词:离子色谱;积分安培检测器;葡萄酒;天然糖

 

Determination of Naturally Occurring Sugars in Wine by Ion Chromatography with
Integrated Pulsed Amperometric Detection

 

MA Jiamin1,2, CUI He1,*, ZHANG Wenhao1, LI Li3, DONG Lizhen1, LI Huixin1

(1. Shandong Extry-Exit Inspection and Quarantine Bureau, Qingdao 266001, China;

2. Qingdao University, Qingdao 266071, China; 3. Chinese Academy of Inspection and Quarantine, Beijing 100123, China)

 

Abstract: We developed a method for the determination of eight naturally occurring sugars in wine by ion chromatography with integral amperometric detection. We used potassium hydroxide (KOH) produced by eluent generator electrolysis for gradient elution. On CarboPac PA20 anion exchange column, all eight target compounds could be separated completely in 30 minutes. The limits of detection (LODs) of these analytes by the integral amperometric detector were very low, and a wide linear range was found. The relative standard deviations (RSDs) for six replicate determinations varied from 4.9% to 8.7%, and the recoveries of these eight sugars from spiked samples ranged from 81.5% to 95.1%. Our method proved to be simple, fast, sensitive and suitable for the analysis of the eight naturally occurring sugars in wine by achieving good separation without derivatization.

Key words: ion chromatography (IC); integral amperometric detector (IAD); wine; naturally occurring sugar

中图分类号:O657.75 文献标志码:A 文章编号:1002-6630(2015)12-0108-05

doi:10.7506/spkx1002-6630-201512020

自然界中,天然糖种类繁多,已发现的单糖主要是戊糖和己糖。天然存在的游离态和具有机能的二糖以哺乳类的乳糖、细菌和昆虫血液等的海藻糖、植物的蔗糖、麦芽糖等为代表。这些是作为各种生物体的能量来源,或者作为生物体组成的物质原料,承担着所必需的糖类的贮藏或运输的重要作用。葡萄酒中的糖种类、含量对酒的风味有较大的影响[1]。从葡萄酒行业内的信息看出在酿造过程中加入某些糖类对提高香气复杂性、浓郁度有很好的帮助[2-3]。根据GB 2760—2011《食品添加剂使用标准》,规定异麦芽酮糖为甜味剂,按生产需要适量使用[4]。对照国外食品添加剂要求,D-木糖、
L-阿拉伯糖和L-山梨糖未列入GB 2760—2011,也没有限量要求[5-6]。因此,对各国进口葡萄酒进行本底调查,测定葡萄酒中天然糖的种类、含量的信息显得尤为必要。

由于食品基质比较复杂,样品前处理较为繁琐,食品中天然糖的测定比较困难[7]。葡萄酒中天然单糖和二糖的测定研究不是很多,目前常见的食品中糖测定方法有化学法(比色法、滴定法)[8-9]、液相色谱串联光检测器法[10-11]、离子色谱法[12-13]、液相色谱-质谱联用法[14-16]、离子色谱-质谱联用法[17-18]、酶催化-电化学法[19]等。电位滴定法方法简单、成本较低、操作简便,可以直接测定出葡萄酒中的还原糖总量,但是不能分别测定出各种糖的含量[9];液相色谱或离子色谱与质谱联用对食品中糖的测定具有方法简便的特点,并且可以同时对糖定性定量分析,但是其前处理较为繁琐,所用质谱仪器设备成本较高[14-18];高效液相色谱串联光检测器及脉冲安培检测器是目前最为广泛的测定食品样品中糖含量的方法之一,但是其所测定的食品样品大多为固体样品,没有将其应用于葡萄酒中天然糖进行分离分析[20]。

在加氧化还原电压条件下,糖类分子具有电化学活泼性,且其在强碱溶液中呈离子化状态[21]。在OH-存在的条件下,它们会部分或全部以阴离子形式存在,可以在阴离子交换色谱柱上被分离。离子色谱法检测糖主要使用金电极的安培检测器。当在金电极上施加电压,糖易在金电极表面发生氧化反应;在碱性条件下,金电极催化活性非常高;而且糖的检测过程中不需衍生反应和复杂的样品纯化处理。

本研究利用石墨化炭黑做填料的固相萃取(solid phase extraction,SPE)柱对葡萄酒样品进行处理,通过阴离子交换色谱法同时对进口葡萄酒中的8 种天然糖进行分离,并通过积分安培检测器对8 种糖进行检测,建立一种葡萄酒样品中糖的离子色谱分析方法。

1 材料与方法

1.1 材料与试剂

葡萄酒样品 市售进口葡萄酒。实验所有用水均为经Milli-Q去离子水制备装置制备的电导率不小于18.2MΩ•cm的去离子水;葡萄糖、阿拉伯糖、木糖、果糖、L-山梨糖、蔗糖、麦芽糖、异麦芽酮糖(帕拉金糖)标准品 德国Dr.Ehrenstorfer公司,购自上海悌希爱试剂公司;甲醇(色谱纯) 德国Merck公司;石墨化炭黑及C18填料 美国Agilent公司。

1.2 仪器与设备

ICS5000+离子色谱仪(带有DP-5四元梯度泵、AS-AP自动进样器、在线淋洗液KOH发生装置EGC500+、
积分安培电化学检测器及Chromeleon数据处理系统)、Dionex CarboPac PA20色谱柱 美国Thermo公司;Milli-Q去离子水制备装置。

1.3 方法

1.3.1 色谱条件

淋洗液:KOH溶液;色谱柱:Dionex CarboPac PA20;柱温:30 ℃;检测器:积分安培检测器;工作电极:Au电极;参比电极:Ag/AgCl电极;梯度洗脱条件见表1,检测器检测波形见表2。

表 1 KOH溶液梯度洗脱程序

Table 1 Gradient elution program

时间/min

0.00

8.00

9.00

24.50

25.50

31.00

KOH溶液/(mmol/L)

20.00

20.00

100.00

100.00

20.00

20.00

 

表 2 糖测定的积分安培检测波形

Table 2 Integrated pulsed amperometric detection waveforms for sugars

时间/s

0

0.2

0.4

0.41

0.42

0.43

0.44

0.5

电位/V

0.1

0.1

0.1

-2

-2

0.6

-0.1

-0.1

积分

 

开始

结束

 

 

 

 

 

 

 

1.3.2 样品前处理

依次使用3 mL去离子水、1 mL甲醇分别活化石墨化炭黑SPE柱,取葡萄酒样品2.0 mL稀释5倍后,取5.0 mL经SPE柱及0.22 μm滤膜过滤,收集滤液。将滤液稀释后经离子色谱分析。

2 结果与分析

2.1 分离条件的选择

淋洗液中OH-有两种作用:首先,作为淋洗离子,OH-浓度增大,淋洗能力增强,糖在色谱柱上的保留时间缩短;其次,OH-提供糖解离为离子所需要的pH值环境,OH-浓度增大,糖分子的离子化程度提高,其在色谱柱上的保留时间延长。因此,糖在色谱柱上的保留时间是两种行为共同作用的结果。由于单糖分子结构、官能团构型十分相似,采用等度洗脱时分离效果较差,因此,采用KOH梯度洗脱的方法,分离效果如图1所示。在选定的色谱条件下,果糖与L-山梨糖虽然未完全分离,但分离度能够满足要求,其余组分分离效果非常好,且所有目标峰峰形良好,灵敏度较高。

956890.jpg 

1.阿拉伯糖;2.葡萄糖;3.木糖;4.果糖;
5. L-山梨糖;6.蔗糖;7.异麦芽酮糖;8.麦芽糖。

图 1 8 种糖标准品分离色谱图

Fig.1 Ion chromatographic separation of eight sugar standards

2.2 前处理方法的优化

在利用离子色谱法对葡萄酒样品中糖的测定时,起干扰作用的杂质主要有偶氮染料(色素)和氨基酸。偶氮染料浓度过大会对离子色谱柱造成伤害,因此实验过程中必须进行脱色。于20.0 mL离心管中分别加入0.2 g C18和石墨化炭黑填料,然后加入稀释20 倍的红葡萄酒样品10.0 mL,超声10 min后离心,取上层清液观察吸附前后溶液颜色的变化,结果见图2;将C18及石墨化炭黑作为填料装填成SPE柱并利用其对红葡萄酒样品进行前处理,取滤液经稀释后进行离子色谱分析,分析结果见图3。

957110.jpg

A

957117.jpg

B

 

957186.jpg

C

957193.jpg

D

 

957248.jpg

E

 

A.干红葡萄酒;B.干红葡萄酒稀释10 倍;C.稀释后经C18吸附并离心后的样品;D.稀释后经石墨化炭黑吸附并离心后的样品;E.去离子水。

图 2 吸附剂吸附前后溶液颜色的变化

Fig.2 Color variations of wine before and after adsorption

由图2和图3对比可以得出,石墨化炭黑可以更好地去除葡萄酒样品中的杂质,测试结果受杂质影响更小。这是由于偶氮染料多含有苯环,近似平面结构,而石墨分子本身具有片层结构,这就使偶氮染料较容易吸附在石墨化炭黑表面,进而将颜色脱去。但是其在脱色的同时,又会吸附部分糖分子,造成回收率较差的问题。而回收率差的问题可以用回收系数进行校正。C18做填料脱色效果较差,离子色谱峰受杂质的影响较大,但是其对糖的回收率较高。综合各种影响因素,对葡萄酒中糖的的测定中,选用石墨化炭黑做SPE柱的填料。

957289.jpg 

a. C18;b.石墨化炭黑。

图 3 不同SPE柱处理过后样品离子色谱图对比

Fig.3 Comparison of ion chromatograms based on separation with different SPE columns

2.3 标准曲线

在选定条件下对混合标准溶液进行离子色谱分析,测试8 种糖的标准曲线,标准曲线参数见表3。由标准曲线及其参数可知,在线性范围内,相关系数R2≥99.87%。8 种糖的检出限(进样量10 μLRSN=3)分别为0.007、0.004、0.005、0.005、0.003、0.014、0.016 mg/L和0.020 mg/L,且均具有较宽的线性范围(0.06~30 mg/L)。

表 3 标准曲线的线性范围、检出限、定量限

Table 3 Linear curve equations, limits of detection and limits of quantification for surgars

组分

CAS编号

保留

时间/min

线性范围/

(mg/L)

线性方程

R2

检出限/

(mg/L)

定量限/

(mg/L)

阿拉伯糖

147-81-9

7.24

0.02~30.0

Y = 2.930 5X+1.093 2

0.997 2

0.007

0.02

葡萄糖

50-99-7

9.90

0.02~30.0

Y = 4.337 9X+2.401 7

0.998 6

0.004

0.02

木糖

58-86-6

10.65

0.02~30.0

Y = 4.811 2X+0.931 0

0.999 5

0.005

0.02

果糖

57-48-7

11.07

0.02~30.0

Y = 1.852 2X+0.204 4

0.999 9

0.005

0.02

L-山梨糖

87-79-6

11.24

0.02~30.0

Y = 2.406 6X-0.001 0

0.999 8

0.003

0.02

蔗糖

57-50-1

12.01

0.06~50.0

Y= 0.130 9X+0.046 5

0.998 7

0.014

0.06

异麦芽酮糖

343336-76-5

17.70

0.06~50.0

Y= 0.887 9X-0.239 2

0.999 5

0.016

0.06

麦芽糖

69-79-4

24.87

0.06~50.0

Y= 1.571 5X-0.696 1

0.999 4

0.020

0.06

 

 

2.4 加标回收率及精密度

为了测试出离子色谱法串联安培检测器方法的准确性,并测试出准确性参数,选取一不含木糖、L-山梨糖、蔗糖、异麦芽酮糖和麦芽糖,且阿拉伯糖、葡萄糖及果糖含量低的样品作为空白基质样品,测定其阿拉伯糖、葡萄糖及果糖含量,定为本底质量浓度。平行取3 份样品,分低、中、高3 个水平,分别添加一定量混合标准溶液,使各组分添加量分别为200.0、500.0、1 000.0 mg/kg。添加标准溶液后,按2.2节步骤进行前处理,平行6 次,测定加标回收率及相对标准偏差,测定结果见表4。

表 4 加标回收率及相对标准偏差

Table 4 Recover and precision, expressed as relative standard deviation (RSD), of this method

组分

本底质量

浓度/

(mg/L)

低添加量

 

中添加量

 

高添加量

回收率/%

相对标准

偏差/%

 

回收率/%

相对标准

偏差/%

 

回收率/%

相对标准

偏差/%

阿拉伯糖

72.45

82.4

7.4

 

89.3

8.0

 

94.6

7.3

葡萄糖

245.12

83.1

6.9

 

91.1

7.5

 

95.1

8.1

木糖

0

81.5

8.1

 

88.9

8.1

 

94.3

6.4

果糖

204.73

84.4

5.2

 

90.8

6.8

 

93.6

8.7

L-山梨糖

0

82.9

7.1

 

91.4

5.7

 

92.9

6.9

蔗糖

0

81.8

8.2

 

88.7

7.3

 

95.1

7.3

异麦芽酮糖

0

83.7

4.9

 

90.9

7.0

 

93.9

6.1

麦芽糖

0

84.2

5.3

 

92.2

6.7

 

93.9

6.5

 

 

由表4可以看出,在线性范围内的加标回收率在81.5%~95.1%之间,相对标准偏差在4.9%~8.7%之间,表明方法精密度可满足分析要求,回收率虽然较差,但是可以通过大量实验数据归纳校正因子的方法进行校正。

2.5 样品分析

表 5 样品分析实验结果

Table 5 Anlytical results obtained for real samples

mg/L

编号

产地

类型

阿拉伯糖

葡萄糖

果糖

麦芽糖

异麦芽酮糖

L-山梨糖

蔗糖

木糖

1

南非

干型

275.997 5

9 315

9 108.75

ND

ND

ND

ND

ND

2

葡萄牙

干型

72.642 5

323.77

477.615

ND

ND

ND

ND

ND

3

法国

干型

577.25

390.575

326.472 5

ND

ND

ND

ND

ND

4

南非

半甜型

217.725

31 184.75

34 341.5

ND

ND

ND

ND

ND

5

法国

248.982 5

17 178.63

71 797

ND

ND

ND

ND

ND

6

捷克

干型

458.177 5

578.01

490.125

ND

ND

ND

ND

ND

7

澳大利亚

干型

208.697 5

579.015

1 136.348

ND

ND

ND

ND

ND

8

法国

1 613.735

2 415.75

1 457.75

ND

ND

ND

ND

ND

9

新西兰

干型

187.587 5

376.627 5

450.455

ND

ND

ND

ND

ND

10

南非

115.53

1 255.643

1 864.455

ND

ND

ND

ND

ND

11

澳大利亚

干型

246.71

765.967 5

884.785

ND

ND

ND

ND

ND

12

南非

干型

191.602 5

474.002 5

502.36

ND

ND

ND

ND

ND

13

意大利

745.727 5

603.772 5

2 082.908

ND

ND

ND

ND

ND

14

意大利

干型

140.295

605.992 5

489.545

ND

ND

ND

ND

ND

15

智利

135.73

36 799.38

58 188.63

ND

ND

ND

ND

ND

16

干型

223.83

950.325

1 743.108

ND

ND

ND

ND

ND

18

701.93

25 036.38

186 066.1

ND

ND

ND

ND

ND

19

干型

103.41

417.56

499.7

ND

ND

ND

ND

ND

20

191.972 5

85 317.13

242 175.5

ND

ND

ND

ND

ND

21

法国

干型

346.797 5

121.075

649.187 5

ND

ND

ND

ND

ND

22

法国

449.71

22 139.88

38 772.58

ND

ND

ND

ND

ND

23

法国

干型

70.727 5

160.772 5

214.312 7

ND

ND

364.975

ND

ND

24

法国

干型

45.087 5

139.457 5

328.292 5

ND

ND

369.675

ND

ND

25

南非

干型

140.082 5

543.4

984.595

ND

ND

614.860

ND

ND

26

葡萄牙

干型

45.067 5

155.56

201.377 5

ND

ND

377.870

ND

ND

27

南非

干型

116.055

862.045

1 165.228

ND

ND

525.810

ND

ND

28

新西兰

133.68

854.095

13 746.25

ND

ND

821.715

ND

ND

29

法国

干型

360.84

220.167 5

195.515

ND

ND

518.950

ND

ND

30

新西兰

73.952 5

500.23

10 016.63

ND

ND

ND

ND

ND

31

意大利

甜型

92.887 5

17 133.88

36 198

ND

ND

ND

ND

ND

32

法国

干型

150.78

234.392 5

1.110 7

ND

ND

ND

ND

ND

33

法国

干型

196.547 5

174.305

ND

ND

ND

ND

ND

ND

34

奥地利

甜型

226.335

51 160.63

100 562.9

ND

ND

ND

ND

ND

35

意大利

甜型

145.32

21 378.38

26 994

ND

ND

ND

ND

ND

36

法国

干型

60.102 5

278.652 5

183.49

ND

ND

ND

ND

ND

37

法国

干型

225.535

185.715

195.257 5

ND

ND

618.750

ND

ND

38

南非

干型

5.437 5

265.35

1 400.25

ND

ND

1 042.000

ND

ND

39

法国

干型

77.912 5

166.737 5

451.02

ND

ND

ND

ND

ND

40

意大利

干型

67.47

770.14

1 154.93

ND

ND

ND

ND

ND

41

法国

干型

61.55

245.305

188.297 5

ND

ND

ND

ND

ND

42

西班牙

干型

309.82

366.562 5

1 068

ND

ND

ND

ND

ND

43

南非

干型

82.242 5

234.195

268.04

ND

ND

ND

ND

ND

44

澳大利亚

干型

283.705

718.335

916.25

ND

ND

ND

ND

ND

45

塞浦路斯

干型

32.627 5

199.612 5

309.53

ND

ND

ND

ND

ND

46

加拿大

甜型

315.245

30 932.88

92 589.13

ND

ND

ND

ND

ND

47

法国

干型

70.317 5

254.172 5

233.1

ND

ND

ND

ND

ND

48

澳大利亚

干型

231.39

262.882 5

383.215

ND

ND

ND

ND

ND

49

南非

干型

31.68

750.955

1 673

ND

ND

ND

ND

ND

50

法国

干型

306.95

198.292 5

204.06

ND

ND

ND

ND

ND

51

南非

干型

57.702 5

335.882 5

417.237 5

ND

ND

ND

ND

ND

52

意大利

干型

133.622 5

901.017 5

1 876.25

ND

ND

ND

ND

ND

53

南非

干型

188.402 5

522.765

1 426.25

ND

ND

ND

ND

ND

54

法国

干型

316.022 5

224.86

206.617 5

ND

ND

ND

ND

ND

55

法国

干型

134.907 5

13.45

ND

ND

ND

ND

ND

ND

56

法国

干型

178.237 5

174.592 5

235.622 5

ND

ND

ND

ND

ND

57

葡萄牙

干型

33.895

126.567 5

180.952 5

ND

ND

ND

ND

ND

58

德国

干型

181.955

421.562 5

5 471.125

ND

ND

ND

ND

ND

59

澳大利亚

干型

40.525

ND

89.317 5

ND

ND

ND

ND

ND

60

法国

干型

39.42

309.112 5

761.692 5

ND

ND

ND

ND

ND

61

法国

半甜型

71.322 5

1 468.25

15 082.88

ND

ND

ND

ND

ND

62

西班牙

干型

307.462 5

302.107 5

539.24

ND

ND

ND

ND

ND

63

美国

干型

7.577 5

1 220.258

2 474.5

ND

ND

ND

ND

ND

64

法国

干型

100.185

1 201.295

2 221.5

ND

ND

ND

ND

ND

65

西班牙

半甜型

67.272 5

8 023

8 324.75

ND

ND

ND

ND

ND

66

美国

干型

242.75

320.557 5

367.192 5

ND

ND

ND

ND

ND

67

法国

干型

192.21

382.162 5

378.847 5

ND

ND

ND

ND

ND

68

法国

干型

65.475

184.677 5

303.007 5

ND

ND

ND

ND

ND

69

澳大利亚

干型

72.75

140.707 5

175.202 5

ND

ND

ND

ND

ND

70

法国

干型

53.15

226.835

298.02

ND

ND

ND

ND

ND

71

法国

干型

169.23

378.712 5

440.465

ND

ND

ND

ND

ND

72

澳大利亚

干型

123.487 5

245.205

563.68

ND

ND

ND

ND

ND

73

葡萄牙

干型

49.867 5

210.147 5

245.545

ND

ND

ND

ND

ND

74

西班牙

半甜型

51.735

9 508.5

9 997.775

ND

ND

ND

ND

ND

75

法国

干型

82.6

202.65

471.5

ND

ND

ND

ND

ND

76

德国

半干型

29.122 5

1 880.25

2 880.75

ND

ND

ND

ND

ND

77

德国

干型

244.887 5

1 106.593

1 895.875

ND

ND

ND

ND

ND

78

澳大利亚

干型

171.382 5

265.337 5

329.667 5

ND

ND

ND

ND

ND

79

美国

干型

217.495

125.578 3

364.957 5

ND

ND

ND

ND

ND

80

葡萄牙

干型

ND

418.35

761.335

ND

ND

ND

ND

ND

81

法国

干型

126.312 5

110.737 5

146.547 5

ND

ND

ND

ND

ND

82

智利

干型

349.757 5

381.87

1 723.75

ND

ND

ND

ND

ND

83

葡萄牙

干型

23.635

106.06

797.375

ND

ND

ND

ND

ND

84

美国

干型

51.317 5

1 171.123

1 862

ND

ND

ND

ND

ND

85

法国

干型

245.132 5

120.955

ND

ND

ND

ND

ND

ND

86

法国

干型

73.737 5

112.122 5

123.59

ND

ND

586.310

ND

ND

87

法国

干型

258.497 5

86.75

160.71

ND

ND

550.455

ND

ND

88

法国

干型

350.565

220.277 5

207.512 5

ND

ND

501.985

ND

ND

89

新西兰

干型

53.155

143.99

120.495

ND

ND

424.875

ND

ND

90

法国

干型

236.582 5

133.997 5

182.94

ND

ND

ND

ND

ND

 

注:ND.该种糖在样品中未检出,—.未标明。

 

由表5得出,进口葡萄酒中主要含有一种国标中未列入的天然糖:阿拉伯糖,并含有大量的葡萄糖和果糖,少量葡萄酒样品中含有L-山梨糖,未检出蔗糖与麦芽糖。其中阿拉伯糖为葡萄生长过程中产生,非人工添加结果检出。

3 结 论

通过实验得出葡萄酒中含有葡萄糖、果糖和阿拉伯糖3 种天然糖。甜型或半甜型(半干型)葡萄酒样品中3 种糖的总量远高于干型葡萄酒中的含量,这是由于干型葡萄酒在酿造过程中比甜型葡萄酒增加了一步脱糖工艺。少量葡萄酒样品中含有L-山梨糖,含量较低。通过本方法检测葡萄酒样品中糖的含量具有前处理方法简单,易于操作的优点,适用于葡萄酒样品中8 种常见天然糖的含量测定。

参考文献:

[1] 王允祥. 论葡萄酒的风味与营养价值[J]. 中国酿造, 1998, 20(2): 8-10; 33.

[2] 康文怀, 徐岩, 赵光鳌. 葡萄酒风味修饰研究进展[J]. 食品与生物技术学报, 2009, 28(4): 438-443.

[3] HEMINGWAY K M, ALSTON M J, CHAPPELL C G, et al. Carbohydrate-flavour conjugates in wine[J]. Carbohydrate Polymers, 1999, 38(3): 283-286.

[4] 卫生部. GB 2760—2011 食品添加剂使用标准[S]. 北京: 中国标准出版社, 2011.

[5] 葛志荣. 国内外食品添加剂使用规范和限量标准[M]. 北京: 中国标准出版社, 2007: 38-39; 294; 1914; 2100.

[6] SUZANNE NIELSEN S. Food chemicals codex[M]. 5th ed. Washington: Institute of medicine of the national academies, 2004.

[7] MOSTAFAZADEH A K, SARSHAR M, JAVADIAN S, et al. Separation of fructose and glucose from date syrup using resin chromatographic method: experimental data and mathematical modeling[J]. Separation and Purification Technology, 2011, 79(1): 72-78.

[8] 田艳玲, 王浩, 张曼玲, 等. 高效液相色谱法与化学法测定蜂蜜中果糖、葡萄糖、蔗糖、麦芽糖含量的比较与研究[J]. 食品研究与开发, 2008, 29(8): 126-129.

[9] 楔德翱. 电位滴定法测定葡萄酒中还原糖含量的研究[J]. 江苏食品与发酵, 2007(4): 39-40.

[10] 吴基任. HPLC-ELSD测定饮料中果糖、葡萄糖、蔗糖和乳糖的含量[J]. 热带农业科学, 2013, 33(6): 55-58.

[11] 林慧, 颜春荣, 徐春祥, 等. HPLC-ELSD法同时测定食品中的10 种糖和糖醇[J]. 食品科学, 2013, 34(12): 286-291. doi:10.7506/spkx1002-6630-201312059.

[12] ARFELLI G, SARTINI E. Characterisation of brewpub beer carbohydrates using high performance anion exchange chromatography coupled with pulsed amperometric detection[J]. Food Chemistry, 2014, 142(1): 152-158.

[13] ZHU Zuoyi, XI Lingling, SUBHANI Q, et al. Simultaneous determination of glucose, D-gluconic, 2-keto-D-gluconic and 5-keto-D-gluconic acids by ion chromatography-pulsed amperometric detection with column-switching technique[J]. Talanta, 2013, 113(1): 113-117.

[14] LEUNG K Y, MILLS K, BURREN K A, et al. Quantitative analysis of myo-inositol in urine, blood and nutritional supplements by high-performance liquid chromatography tandem mass spectrometry[J]. Journal of Chromatography B, 2011, 879(26): 2759-2763.

[15] ZHANG Ping, WANG Zhongfu, XIE Mingming, et al. Detection of carbohydrates using a pre-column derivatization reagent 1-(4-isopropyl) phenyl-3-methyl-5-pyrazolone by high-performance liquid chromatography coupled with electrospray ionization mass spectrometry[J]. Journal of Chromatography B, 2011, 878(15/16): 1135-1144.

[16] LIU Zhirui, LOU Ziyang, DING Xuan, et al. Global characterization of neutral saccharides in crude and processed Radix Rehmanniae by hydrophilic interaction liquid chromatography tandem electrospray ionization time-of-flight mass spectrometry[J]. Food Chemistry, 2013, 141(3): 2833-2840.

[17] KOTNIK D, ŠMIDOVNIK A, JAZBEC-KRI?MAN P, et al. Direct analysis of carbohydrates in animal plasma by ion chromatography coupled with mass spectrometry and pulsed amperometric detection for use as a non-invasive diagnostic tool[J]. Journal of Chromatography B, 2011, 879(31): 3700-3706.

[18] QIAN Weiliang, KHAN Z, WATSON D G, et al. Analysis of sugars in bee pollen and propolis by ligand exchange chromatography in combination with pulsed amperometric detection and mass spectrometry[J]. Journal of Food Composition and Analysis, 2008, 21(1): 78-83.

[19] ODACI D, TELEFONCU A, TIMUR S. Maltose biosensing based on co-immobilization of α-glucosidase and pyranose oxidase[J]. Bioelectrochemistry, 2010, 79(1): 108-113.

[20] 林榕. 离子色谱同时测定食品中糖醇和糖的方法学研究与应用[D]. 天津: 天津大学, 2010.

[21] ANDERSEN R, SØRENSEN A. Separation and determination of alditols and sugars by high-pH anion-exchange chromatography with pulsed amperometric detection[J]. Journal of Chromatography A, 2000, 897(1/2): 195-204.

 

收稿日期:2014-09-28

基金项目:国家重大科学仪器研发专项(2012YQ090229);国家质检公益性科研专项(201210012)

作者简介:马甲民(1988—),男,硕士研究生,研究方向为离子色谱及应用。E-mail:jiaminma@126.com

*通信作者:崔鹤(1962—),男,研究员,博士,研究方向为色谱及色谱联用技术。E-mail:cuihe88@aliyun.com

续表5

mg/L