革命菜黄酮类化合物提取及其抗氧化性研究

食品科学 ›› 2012, Vol. 33 ›› Issue (22): 48-52.

革命菜黄酮类化合物提取及其抗氧化性研究

张福平，郑绵青，吴美娟

韩山师范学院生物系

收稿日期:2011-09-09 修回日期:2012-10-19 出版日期:2012-11-25 发布日期:2012-11-20
通讯作者: 张福平 E-mail:hsfpzh@126.com
基金资助:
广东省科学事业费计划项目

Extraction and Antioxidant Activity of Flavonoids from Gynura crepidioides

Received:2011-09-09 Revised:2012-10-19 Online:2012-11-25 Published:2012-11-20

摘要/Abstract

摘要： 目的：优化提取革命菜黄酮类化合物的最佳工艺条件并测定其体外抗氧化性。方法：采用L9(34)正交试验法研究从革命菜中提取黄酮类化合物的最佳提取工艺，考察乙醇体积分数、浸提温度、浸提时间及料液比四因素对提取效率的影响，并测定其体外抗氧化活性。结果：革命菜黄酮类化合物的最佳提取工艺条件为乙醇体积分数70%、浸提温度65℃、浸提时间3.5h、料液比1:30(g/mL)。在最佳工艺条件下，测得革命菜中黄酮类物质提取量为31.88mg/g；革命菜黄酮类化合物对羟自由基具有明显的清除作用，且随着黄酮质量浓度增加，清除能力增强；对超氧阴离子自由基具有一定的抑制作用。结论：革命菜黄酮类合物抗氧化活性明显，具有开发利用价值。

关键词: 革命菜, 黄酮, 提取工艺, 抗氧化活性

Abstract: The extraction of flavonoids from Gynura crepidioides stems and leaves was optimized using an L9(34) orthogonal array design. The effects of ethanol concentration, temperature, extraction time and solid/solvent ratio on extraction efficiency were examined. The optimal extraction conditions were found to be extraction at 65 ℃ for 3.5 h with 70% ethanol with a solid/solvent ratio of 1:30 (g/mL). Under these conditions the measured extraction yield of flavonoids from Gynura crepidioides stems and leaves was 31.88 mg/g. The obtained extract had a considerable scavenging effect against hydroxyl free radicals in a dose-dependent fashion. Besides, it also could scavenge superoxide anion free radicals. Based on these results, it can be concluded that flavonoids from Gynura crepidioides stems and leaves have the potential to be developed as promising free radical scavengers.

Key words: Gynura crepidioides, flavonoids, extraction, antioxidant activity

中图分类号:

R931.6

张福平，郑绵青，吴美娟. 革命菜黄酮类化合物提取及其抗氧化性研究[J]. 食品科学, 2012, 33(22): 48-52.

参考文献

[1] 张福平，陈蔚辉. 粤东地区野生蔬菜资源调查研究[J].汕头大学学报（自然科学版），2005,20(4):71~80.
[2] 张秋燕，张福平. 粤东地区菊科药用植物资源研究[J]. 时珍国医国药，2009，20( 11)：2868~2872.
[3] 李永强，王亚男，何杨艳等. 干旱胁迫对外来杂草野茼蒿抗氧化系统的影响[J].四川师范大学学报(自然科学版) ，2008,31(5)：607~609.
[4] 黄秋生，郭水良，方芳等. 野生蔬菜野茼蒿营养成分分析及重金属元素风险评估[J].科技通报，2008(2)：203.
[5] 张福平，连少虹，陈蔚辉.佛手柑黄酮类化合物提取工艺研究[J]. 食品研究与开发，2005，26（6）：99~100.
[6] Sun ZH，Li BZ， ZhaoMM，et al. Optimization of the extraction technology of the total flavonoids of semen litchi using response surface analysis. Food & Machinery， 2006，22: 30~32.
[7] 李盈蕾，陈建华，陈亚洲.槲寄生总黄酮微波提取工艺及其抗氧化活性研究[J]. 食品科学，2010，31(12):62~66.
[8] 薛淑萍，张立伟.桑叶中黄酮类化合物的提取工艺的优化[J]. 中国生化药物杂志，2010，31(6):405~407.
[9] 张丽珍，周之荣，王群等.桔皮中总黄酮的微波_超声辅助协同提取工艺研究[J]. 时珍国医国药，2010，21( 6)：1405~1407.
[10] 夏道宗，于新芬，王慧铭等.麦冬总黄酮提取的响应面法优化及抗氧化性研究[J]. 中华中医药杂志，2009，24(12):1629~1632.
[11] 邓斌，王存嫦，徐安武.微波辅助提取花生壳黄酮类化合物及其抗氧化性研究[J]. 中国油脂，2009，34(3)：54~57.
[12] 耿敬章. 香樟叶中黄酮类化合物的提取工艺[J].西北农业学报，2009,18(1):267~270.
[13] 卢艳花，魏东芝，蒋晓萌等.中药有效成分提取分离技术（第一版）[M].北京:化学工业出版社.2007,9.
[14] 孙锋，张宽朝.野生艾草黄酮的含量及抗氧化性研究[J]. 中国野生植物资源，2009，28(3):58~61.

[1]	白海军，李志江. 牛磺酸-水解大豆蛋白复合体系对运动性疲劳大鼠的影响[J]. 食品科学, 2021, 42(9): 145-150.
[2]	阴宏婕，鞠化鹏，钟利敏，孙娜，林松毅. 核黄素结合肽的生物活性及结构表征[J]. 食品科学, 2021, 42(9): 137-144.
[3]	王凤，肖楚翔，刘淑珍，王凤舞. 榴莲核黄酮的提取及其对秀丽隐杆线虫氧化和衰老的影响[J]. 食品科学, 2021, 42(9): 123-129.
[4]	郭刚军，胡小静，付镓榕，马尚玄，徐荣，黄克昌，彭志东，贺熙勇，邹建云. 澳洲坚果青皮不同极性溶剂分步提取物功能成分与抗氧化活性及其相关性分析[J]. 食品科学, 2021, 42(7): 74-82.
[5]	贺文杰，吴彬彬，胥伟，王宏勋，易阳，雷飞飞. 热处理中芡实黄酮对肌原纤维蛋白结构的影响[J]. 食品科学, 2021, 42(6): 46-52.
[6]	李伟，叶嘉宜，陈运娇，曹庸. 桉叶多酚提取物体内外抗氧化活性评价[J]. 食品科学, 2021, 42(5): 160-168.
[7]	麦绮莹，范亚苇，邓泽元，张兵. 胎牛血清与矢车菊素-3-葡萄糖苷非共价相互作用机制及对其抗氧化活性的影响[J]. 食品科学, 2021, 42(5): 1-8.
[8]	魏晨业，包晓玮，王娟，何梦梦，曾兰君，张亚涛. 沙棘多糖分离纯化及抗氧化活性[J]. 食品科学, 2021, 42(4): 227-232.
[9]	毛小雨，许馨予，杨鹄隽，贾斌，左锋. 紫花芸豆蛋白体外消化产物的抗氧化活性及结构特征分析[J]. 食品科学, 2021, 42(3): 56-62.
[10]	杨二林，赵浩安，徐元元，王悦，王银，曹炜. 枣花蜜酚类化合物组成及其抗氧化活性分析[J]. 食品科学, 2021, 42(3): 150-157.
[11]	周浓，余志良，李承勇. 玉米醇溶蛋白-番石榴黄酮复合纳米颗粒的制备及其抗氧化活性[J]. 食品科学, 2021, 42(3): 186-193.
[12]	姜慧，孔立敏，王翀，王彦波，傅玲琳，周涛. 条斑紫菜多糖的降解条件优化及其生物活性[J]. 食品科学, 2021, 42(3): 38-47.
[13]	张萌，曹婷婷，程紫薇，金文渊，金鹏，郑永华. 高湿贮藏对青椒果实冷害和抗氧化活性的影响[J]. 食品科学, 2021, 42(3): 243-250.
[14]	蒋鹏飞，高海东，赵丽丽，王赵改，史冠莹，张乐，王晓敏，王旭增. 不同采收期香椿茶发酵前后活性成分、降糖活性及其挥发性成分比较分析[J]. 食品科学, 2021, 42(2): 262-270.
[15]	赵磊，潘飞，林文轩，徐美利，鲍玺，陈艳麟，王成涛，连运河. 甜叶菊废渣提取物的主要成分分析及其抗氧化作用[J]. 食品科学, 2021, 42(2): 247-254.